Todos los productos son reactivos químicos exclusivamente para investigación científica. No aptos para consumo ni uso en personas o animales. Política
Los pedidos realizados antes de las 14:00 (CET) en día laborable salen el mismo día. Envío gratis desde 75 € Pureza ≥ 99% (HPLC)

Revisión de investigación

Glutatión 400, 600 y 1500 mg: tripéptido redox en la investigación del estrés oxidativo

14 de noviembre de 2026 · 6 min de lectura

Un tripéptido en el centro del sistema redox

El glutatión, abreviado GSH, es un tripéptido formado por tres aminoácidos: ácido glutámico unido a través de su grupo gamma carboxilo, cisteína y glicina. Se escribe como gamma-Glu-Cys-Gly. La molécula tiene la fórmula C10H17N3O6S, una masa molecular de 307,3 g/mol y el número CAS 70-18-8.

El elemento clave de esta estructura es el grupo tiol (SH) del residuo de cisteína. Es él quien determina la capacidad del glutatión para ceder electrones y, por tanto, su papel en las reacciones redox. En biología celular, el glutatión es una de las moléculas de este tipo más estudiadas. Se ha identificado en las células de casi todos los organismos aerobios, principalmente en el citosol y en las mitocondrias.

Para los equipos que trabajan en estrés oxidativo, el glutatión es un punto de partida natural. Permite comparar el estado redox de un cultivo con valores control y comprobar cómo responde el sistema ante un estímulo. El reactivo se suministra como liofilizado con una pureza igual o superior al 99 % por HPLC, y su masa está confirmada por MS. Puede encontrarlo en la ficha del producto Glutatión.

Forma reducida y forma oxidada: GSH frente a GSSG

En la célula, el glutatión aparece en dos formas principales. La forma reducida (GSH) tiene un grupo tiol libre y puede ceder electrones a moléculas reactivas. Tras esa reacción, dos moléculas de GSH se unen mediante un puente disulfuro y forman la forma oxidada, GSSG.

In vitro, la proporción entre GSH y GSSG es uno de los indicadores básicos del estado redox. Una alta proporción de forma reducida suele describirse como señal de funcionamiento normal en células cultivadas. Un desplazamiento hacia GSSG se interpreta a menudo como indicio de estrés oxidativo creciente. Esta interpretación requiere cautela, porque el resultado depende del método de medición, del tipo celular y del tiempo de cultivo.

En la práctica, conviene decidir de antemano qué forma se va a medir, cómo se protegerá la muestra frente a la oxidación y cuándo se analizará. El glutatión en disolución se oxida gradualmente, así que el tiempo que transcurre entre la preparación y la medición puede cambiar el resultado.

El sistema enzimático: GPx, GST y glutatión reductasa

El glutatión rara vez actúa solo. Los estudios de enzimología lo describen junto con tres enzimas:

  • glutatión peroxidasa (GPx), que usa GSH para reducir el peróxido de hidrógeno y los peróxidos lipídicos,
  • glutatión S-transferasas (GST), que en modelos enzimáticos catalizan la unión del glutatión a xenobióticos,
  • glutatión reductasa, que regenera GSH a partir de GSSG a costa de NADPH.

Estas tres piezas forman un ciclo que la literatura denomina ciclo GSH/GSSG. La glutatión reductasa mantiene el conjunto de forma reducida en equilibrio, y su actividad depende de la disponibilidad de NADPH. Por eso, en los proyectos sobre estrés oxidativo, la medición del glutatión suele complementarse con un ensayo de actividad enzimática.

Dónde aparece el glutatión en la investigación

La literatura menciona el glutatión en varios contextos que conviene distinguir:

Ámbito Modelo típico Qué se mide
Estrés oxidativo cultivos celulares relación GSH/GSSG, niveles de especies reactivas de oxígeno
Señalización redox líneas celulares cambios en el estado tiol de las proteínas
Enzimología preparados enzimáticos actividad de GPx, GST y reductasa
Xenobióticos modelos hepáticos in vitro conjugación de un sustrato mediada por GST
Modelos animales roedores marcadores de estrés oxidativo en tejidos

El glutatión también ha sido objeto de estudios clínicos. Esa parte de la literatura requiere una revisión aparte y detallada, que queda fuera del alcance de este artículo. Aquí nos centramos en el trabajo de laboratorio con el reactivo.

Cómo planificar un experimento con glutatión

Un buen proyecto parte de la pregunta de investigación, y solo después se elige el reactivo. Cuatro preguntas ayudan a organizar el trabajo:

  1. ¿Mides el contenido de GSH, el de GSSG o la relación entre ambos?
  2. ¿Qué grupos control permitirán separar el efecto del ruido de medición?
  3. ¿En qué momento y en qué tampón procesarás las muestras?
  4. ¿Necesitas un ensayo de actividad enzimática junto a la medición del glutatión?

Las respuestas influyen en el tamaño del vial. Un vial pequeño resulta adecuado para un estudio piloto. Uno mayor es útil en series repetidas en las que quieres trabajar con material de un mismo lote. El glutatión está disponible en presentaciones de 400 mg, 600 mg y 1500 mg.

Para muchos equipos, el control de calidad es igual de importante. La pureza de cada lote se confirma por HPLC (99 % o más) y la masa molecular por MS. Así sabes que el vial contiene la sustancia descrita en la ficha del producto.

Qué controlar en el cultivo

Medir el glutatión solo tiene sentido dentro de un experimento bien diseñado. En los cultivos celulares, el resultado depende de la densidad celular, de la composición del medio, de la temperatura y del momento de la toma de muestra. Estos factores pueden generar diferencias mayores que el efecto que se quiere estudiar.

Por ello conviene mantener en paralelo un control sin tratar, un control de vehículo y muestras tomadas en varios puntos temporales. Así se puede distinguir un cambio provocado por el estímulo de las fluctuaciones naturales que acompañan al crecimiento celular. También es útil registrar el tiempo que pasa desde la recogida de las células hasta terminar la preparación de la muestra, porque ese intervalo suele determinar cuánto GSH se convierte en GSSG antes del análisis.

Al interpretar los resultados, conviene plantearse varias preguntas a la vez: ¿el cambio afecta a todo el conjunto de glutatión o solo a una forma? ¿Va acompañado de una variación en la actividad enzimática? ¿Repetir el experimento otro día da un resultado parecido? Las respuestas no sustituyen a un plan cuidadoso, pero muestran si las conclusiones son prudentes y fiables.

Pedido y envío

Los pedidos se despachan en un plazo de 24 horas. Para Polonia el envío se realiza a los puntos de recogida InPost, y DPD entrega en toda Europa.

Trabajo en el laboratorio

Guarda el liofilizado a -20 °C, bien cerrado y protegido de la luz. Antes de abrir el vial, déjalo alcanzar la temperatura ambiente para que no se condense humedad en su interior. La humedad acelera la degradación, y el grupo tiol se oxida con facilidad.

El glutatión se disuelve en agua, incluida el agua bacteriostática si planeas varias extracciones de un mismo vial. Conserva la disolución preparada a 2-8 °C y evita congelar y descongelar repetidamente. Como se oxida con facilidad, lo mejor es preparar la disolución justo antes de usarla.

Calcula la concentración de trabajo en la calculadora de concentraciones antes de empezar. Así anotarás la cantidad exacta de sustancia en tu protocolo y podrás repetir la preparación en condiciones idénticas.